ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:2488-1</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>Área: <b>Ecologia Microbiana ( Divisão I )</b><p align=justify><strong><P ALIGN=CENTER>COMPOSIÇÃO DA COMUNIDADE MICROBIANA ASSOCIADA A RESERVATÓRIO DE PETRÓLEO PELA ANÁLISE DO DNAR 16S</P></strong></p><p align=justify><b><u>Nelma Regina Segnini Bossolan Bossolan </u></b> (<i>IFSC-USP</i>); <b>Julia Mara Martins Martins </b> (<i>IFSC-USP</i>); <b>Antonia Garcia Torres Volpon Volpon </b> (<i>CENPES-PETROBRAS</i>); <b>Renata Casella Souza Souza </b> (<i>CENPES-PETROBRAS</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 115%; FONT-FAMILY: 'Calibri','sans-serif'; mso-fareast-language: EN-US; mso-bidi-font-family: 'Times New Roman'; mso-fareast-font-family: Calibri; mso-ansi-language: PT-BR; mso-bidi-language: AR-SA"> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; LINE-HEIGHT: normal; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-FAMILY: 'Verdana','sans-serif'"><FONT face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><FONT size=3>A análise da comunidade microbiana associada a reservatórios de petróleo tem sido baseada em métodos moleculares, em conjunto com os métodos dependentes de cultivo, para a compreensão de sua composição e dinâmica. Um dos métodos moleculares inclui o seqüenciamento de fragmentos de DNAr 16S extraídos e amplificados a partir da amostra ambiental, com posterior pesquisa nos banco de dados disponíveis e análise filogenética das seqüências obtidas.<?xml:namespace prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" /><o:p></o:p></FONT></FONT></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; LINE-HEIGHT: normal; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-FAMILY: 'Verdana','sans-serif'"><FONT face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><FONT size=3><SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>O presente trabalho teve como objetivo a caracterização da comunidade microbiana aplicando-se esse método, analisando-se amostras do fluido de produção (água/óleo) de um reservatório de petróleo terrestre da região nordeste do Brasil.<o:p></o:p></FONT></FONT></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; LINE-HEIGHT: normal; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-FAMILY: 'Verdana','sans-serif'"><FONT face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><FONT size=3>O DNA total obtido a partir das amostras foi amplificado por PCR tendo como alvo o fragmento de <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>DNAr 16S utilizando-se pares de <I style="mso-bidi-font-style: normal">primers</I> específicos para os domínios Archaea (<?xml:namespace prefix = st1 ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:smarttags" /><st1:metricconverter w:st="on" ProductID="21f"><st1:metricconverter w:st="on" ProductID="21f">21f</st1:metricconverter> e</st1:metricconverter> 1041r) e Eubacteria (<st1:metricconverter w:st="on" ProductID="27f">27f</st1:metricconverter> e 1492r). <SPAN style="mso-bidi-font-style: italic">As seqüências obtidas foram analisadas no programa CodonCode Aligner e submetidas a um banco de dados utilizando o programa BLAST (<I>Basic Local Alignment Search Tool</I>) para uma análise preliminar de identificação do microrganismo mais semelhante.<o:p></o:p></SPAN></FONT></FONT></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; LINE-HEIGHT: normal; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 115%; FONT-FAMILY: 'Verdana','sans-serif'; mso-fareast-language: EN-US; mso-bidi-font-family: 'Times New Roman'; mso-fareast-font-family: Calibri; mso-ansi-language: PT-BR; mso-bidi-language: AR-SA"><FONT face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif" size=3>Das seqüências analisadas, foram detectados 7 gêneros (<I style="mso-bidi-font-style: normal">Methanothermococcus</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Marinobacterium</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Maritimibacter</I>,<I style="mso-bidi-font-style: normal"> Thioclava</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Paracoccus</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Methanosaeta</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Parvibaculum</I>), 4 espécies (<I style="mso-bidi-font-style: normal">Methanococcus maripaludis, M. thermolithotrophicus, Marinobacterium litorale, Aquaspirillum itersonii </I>subsp<I style="mso-bidi-font-style: normal">. nipponicum</I>) e 3 bactérias não cultiváveis. O gênero <I style="mso-bidi-font-style: normal">Methanothermococcus</I> foi o único a estar presente em todas as amostras. A maioria dos gêneros detectados corresponde a microrganismos que podem fazer parte da microbiota de ambientes extremos (alta temperatura e/ou salinos) como é o caso do ambiente amostrado. Em uma próxima etapa do trabalho esses dados serão confrontados com (a) as análises de seqüenciamentos feitas a partir de bandas geradas pela técnica de DGGE e (b) os resultados obtidos a partir do cultivo seletivo de alguns grupos microbianos (bactérias redutoras de sulfato, redutoras de ferro, redutoras de nitrogênio, arqueas metanogênicas, totais).</FONT></SPAN></SPAN></P></font></p><br><b>Palavras-chave: </b>&nbsp;bactérias termofílicas, DNAr 16S, Methanothermococcus, petróleo, reservatório</td></tr></table></tr></td></table></body></html>