ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:1828-1</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>Área: <b>Genética e Biologia Molecular ( Divisão N )</b><p align=justify><strong>ANÁLISE DA LOCALIZAÇÃO SUBCELULAR DE PROTEÍNAS DE <EM>CANDIDA ALBICANS</EM> FUSIONADAS COM GFP APÓS TRANSPOSIÇÃO IN VITRO</strong></p><p align=justify><b><u>Marcos Vinicios Salles Dias </u></b> (<i>FMRP- USP</i>); <b>Carol Kobori Fonseca </b> (<i>FMRP- USP</i>); <b>Paulo Sérgio Rodrigues Coelho </b> (<i>FMRP- USP</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2><P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; TEXT-INDENT: 35.4pt; LINE-HEIGHT: 200%; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 200%">Uma das análises funcionais de novos genes consiste na determinação da localização subcelular da proteína codificada. Neste trabalho descrevemos a utilização de dois transposons artificiais derivados do transposon bacteriano Tn5 que incorporam a sequência codificadora de <I style="mso-bidi-font-style: normal">GFP</I> (green fluorescent protein) para gerar fusões em proteínas ainda não caracterizadas no fungo oportunista <I style="mso-bidi-font-style: normal">Candida albicans</I>. Os transposons utilizados também contêm os marcadores URA3 e Kan<SUP>r</SUP> para seleção de leveduras e bactérias, respectivamente. Após a transposição <I style="mso-bidi-font-style: normal">in vitro</I>, os alelos contendo as inserções podem ser transferidos para o lócus cromossômico por recombinação homóloga. <?xml:namespace prefix = o ns = "urn:schemas-microsoft-com:office:office" /><o:p></o:p></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; TEXT-INDENT: 35.4pt; LINE-HEIGHT: 200%; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 200%">O primeiro transposon testado, CaTn5GFP-FL, permite que após transposição no plasmídeo alvo os marcadores de seleção sejam eliminados por digestão enzimática e religado, resultando num produto que codifica para proteína de fusão com GFP <I style="mso-bidi-font-style: normal">full-lenght</I>. Como alvo utilizamos <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>o gene <I style="mso-bidi-font-style: normal">PGA13</I> que codifica para uma putativa proteína ancorada por GPI (glicosilfosfatidilinositol). Após a reação de transposição <I style="mso-bidi-font-style: normal">in vitro</I> <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>obtivemos duas inserções <I style="mso-bidi-font-style: normal">in-frame</I>. <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>A marcação pontuada da fluorescência de Pga13-GFP foi observada na periferia das células confirmando que a Pga13p é uma proteína de superfície (membrana ou parede celular). <o:p></o:p></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; TEXT-INDENT: 35.4pt; LINE-HEIGHT: 200%; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 200%">O segundo transposon testado CaTn5GFP-SAT1-FLP, <SPAN style="mso-spacerun: yes">&nbsp;</SPAN>pode gerar fusões com GFP truncadas na região C-terminal do gene alvo. Utilizamos como alvo uma mini-biblioteca de 20 genes não caracterizados em <I style="mso-bidi-font-style: normal">C. albicans</I> cujos homólogos em <I style="mso-bidi-font-style: normal">S. cerevisiae</I> estão envolvidos na organização do citoesqueleto de actina. Obtivemos uma inserção in-frame no gene <I style="mso-bidi-font-style: normal">VRP1</I>. A análise da fluorescência da proteína de fusão <I style="mso-bidi-font-style: normal">VRP1-GFP</I> tanto em leveduras quanto em hifas de <I style="mso-bidi-font-style: normal">C. albicans</I> mostra uma distribuição similar ao citoesqueleto cortical de actina com alguns pontos de co-localização. <o:p></o:p></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; TEXT-INDENT: 35.4pt; LINE-HEIGHT: 200%; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 200%">Em conclusão os transposons utilizados representam novas ferramentas para obtenção de dados de localização subcelular de proteínas em <I style="mso-bidi-font-style: normal">C. albicans</I>.<o:p></o:p></SPAN></P> <P class=MsoNormal style="MARGIN: 0cm 0cm 0pt; TEXT-INDENT: 35.4pt; LINE-HEIGHT: 200%; TEXT-ALIGN: justify"><SPAN style="FONT-SIZE: 11pt; LINE-HEIGHT: 200%"><o:p>&nbsp;</o:p></SPAN></P></font></p><br><b>Palavras-chave: </b>&nbsp;Candida albicans, GFP, Localização subcelular</td></tr></table></tr></td></table></body></html>