ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:1482-2</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>Área: <b>Ecologia Microbiana ( Divisão I )</b><p align=justify><strong>ISOLAMENTO E CARACTERIZAÇÃO DE BACTÉRIAS PROMOTORAS DE CRESCIMENTO EM ESPÉCIES DE <SPAN STYLE="FONT-STYLE: ITALIC;">BRACHIARIA </SPAN>EM DOIS AMBIENTES AMAZÔNICOS </strong></p><p align=justify><b>Deisy Camila Golfetto Golfetto </b> (<i>UFRR</i>); <b>Maria Elena Almeidda Ivanoff Ivanoff </b> (<i>UFRR</i>); <b>Gabriela Almeida Oliveira Oliveira </b> (<i>UFRR</i>); <b>Gabriela Queiroz Pelzer Pelzer </b> (<i>UFRR</i>); <b><u>Luana Mesquita da Silva Silva </u></b> (<i>UFRR</i>); <b>Liamara Perin Perin </b> (<i>Embrapa Roraima</i>); <b>Jerri Édson Zilli Zilli </b> (<i>Embrapa Roraima</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2><meta http-equiv="CONTENT-TYPE" content="text/html; charset=utf-8"><title></title><meta name="GENERATOR" content="BrOffice.org 3.0 (Win32)"><style type="text/css"> <!-- @page { margin: 2cm } P { margin-bottom: 0.21cm } --> </style> <p class="western" align="justify"><font face="Times New Roman, serif"><font color="#000000"><font size="3">Diversos estudos tem buscado formas para resolver os problemas da degradação de pastagens em solos tropicais, sendo uma delas o uso de bactérias promotoras de crescimento vegetal. O objetivo deste trabalho foi isolar e caracterizar bactérias promotoras de crescimento a partir de plantas de </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>Brachiaria brizantha</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> e </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>B.&nbsp;humidicola</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> obtidas de pastagens nos ambientes mata e cerrado no Estado de Roraima, nos município de Mucajaí e Boa Vista, respectivamente. Em laboratório, separou-se parte aérea e raiz das plantas e procedeu-se a lavagem com água destilada esterilizada e trituração em solução salina (0,85% NaCl). Alíquotas de 100mL da suspensão de plantas trituradas - diluições 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">-2</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> e 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">-4</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> para a parte aérea e, 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">-3</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> e 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">-5</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> para as raízes - foram inoculadas em placas de Petri contendo o meio de cultura Dyg s. Após a incubação das placas - 10 dias no escuro; 28ºC, procedeu-se a repicagem, caracterização fenotípica das bactérias, avaliação da capacidade de fixação de nitrogênio atmosférico em meio de cultura semi-sólido BMGM, solubilização de fosfato cálcio em meio GL sólido e produção de auxina através do reagente de Salkowisk. A população de bactérias associadas com as plantas de brachiaria foi da ordem 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">5</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> células g</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">-1</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> de planta na parte aérea e 10</font></font><font color="#000000"><sup><font size="3">7</font></sup></font><font color="#000000"><font size="3"> nas raízes, obtendo-se 182 isolados fenotipicamente diferentes, sendo 95 isolados da raiz e 87 da parte aérea, havendo maior índice de diversidade de Shannon-Weaver de grupos fenotípicos de bactérias para a </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>B. humidicola</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> e para o ambiente cerrado. Após o agrupamento pelo coeficiente de </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>Simple Matching</i></font></font><font color="#000000"><font size="3">, quarenta isolados fenotipicamente diferentes foram avaliados quanto à presença dos mecanismos de promoção do crescimento vegetal. Destas 40 bactérias, 6 apresentaram capacidade de fixação de nitrogênio, havendo baixa similaridade fenotípica com as bactérias de referência </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>Herbaspirillum seropedicae</i></font></font><font color="#000000"><font size="3">, </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>Azospirillum brasilense, A. amazonense</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> e </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>Burkolderia kururiensis</i></font></font><font color="#000000"><font size="3">; 8 produziram auxina; e 6 solubilizaram fosfato de cálcio. Entre estas 13 bactérias promotoras de crescimento, 11 foram oriundas da espécie </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>B. brizantha</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> e 2 da </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>B. humidicola</i></font></font><font color="#000000"><font size="3">, havendo predomínio das mesmas no cerrado e nas raízes das plantas. Um dos isolados oriundo da raiz de </font></font><font color="#000000"><font size="3"><i>B. brizantha</i></font></font><font color="#000000"><font size="3"> proveniente do cerrado, apresentou capacidade de fixação de nitrogênio, produção de auxina e solubilização de fosfato.</font></font></font></p> <p class="western" align="justify"><font face="Times New Roman, serif">Apoio: MCT/CNPq/CT-Amazônia e MCT/CNPq/CT-Energ (Processo 554022/2006-0)</font></p> </font></p><br><b>Palavras-chave: </b>&nbsp;Amazônia, Bactérias diazotróficas, Poaceas</td></tr></table></tr></td></table></body></html>