ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:1420-2</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>Área: <b>Microbiologia de Alimentos ( Divisão K )</b><p align=justify><strong> <DIV STYLE="TEXT-ALIGN: CENTER;"><SPAN STYLE="FONT-WEIGHT: BOLD;">USO DE BROMETO DE ETÍDEO MONOAZIDA E PCR EM TEMPO REAL PARA DETECÇÃO DE CÉLULAS VIÁVEIS DE</SPAN> <SPAN STYLE="FONT-STYLE: ITALIC;">LISTERIA MONOCYTOGENES</SPAN></DIV> </strong></p><p align=justify><b><u>Rosinéa Aparecida de Paula </u></b> (<i>AgroGenética</i>); <b>Renata Flávia Ferreira E Freitas </b> (<i>AgroGenética</i>); <b>Marta Fonseca Martins Guimarães </b> (<i>Embrapa</i>); <b>Francismar Corrêa Marcelino </b> (<i>Embrapa</i>); <b>Edna Froeder Arcuri </b> (<i>Embrapa</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2><div style="text-align: justify;"><font size="4">A análise de PCR em Tempo Real está sendo cada vez mais utilizada para detecção e quantificação de patógenos em amostras de alimentos, uma vez que gera resultados mais rápidos e específicos. A restrição para um uso mais amplo desta técnia é que devido a sua alta sensibilidade, os teste identificam o DNA de células mortas, tornando-o inadequado para fins de diagnóstico. Para contornar este problema tem sido proposto o uso do corante Brometo de Etídeo Monoazida (EMA) para discriminar células viáveis de células mortas. Em estudos preliminares foi verificado que EMA inibe amplificação de células inviáveis de <span style="font-style: italic;">Listeria monocytogenes</span>, por PCR convencional. O objetivo deste estudo foi padronizar a técnica EMA-PCR em Tempo Real para detecção de células viáveis de <span style="font-style: italic;">L. monocytogene</span>s. Foram construídos <span style="font-style: italic;">primers</span> e sonda TaqMan específicos para <span style="font-style: italic;">L. monocytogene</span>s e o gene <span style="font-style: italic;">prfA</span> foi utilizado como seqüência alvo. Foram avaliadas várias espécies de <span style="font-style: italic;">Listeria</span>, sendo que houve amplificação apenas de <span style="font-style: italic;">L. monocytogenes</span> indicando especificidade da amplificação e <span style="font-style: italic;">L. monocytogenes</span> ATCC 7644 foi selecionada para os testes de EMA-PCR. Concentrações variadas de EMA foram adicionadas a microtubos com 10<sup>8</sup> células viáveis ou inviáveis de <span style="font-style: italic;">L. monocytogenes</span> (tratamento térmico de 98 <sup>o</sup>C/20 minutos) e estes foram expostos à luz (650 W) por 15 minutos para ativação e fotólise do EMA. Em segida, foi realizada a extração de DNA e PCR em Tempo Real. O DNA foi extraído após tratamentos subseqëntes das células com proteases e fervura. A reação de amplificação foi preparada com TaqMan Universal Master Mix 1X (Applied Biosystem), 250 ng de DNA, 400 nM de cada <span style="font-style: italic;">primer</span> e 400 nM de sonda. A concentração de 6 ug/mL de EMA foi necessária para inibir a amplificação de DNA de células inviáveis de <span style="font-style: italic;">L. monocytogenes</span> sendo que nesta concentração não houve interferência na amplificação de DNA de células viáveis. Após a definição desta concentração, o tratamento das células com 6 ug/mL de EMA foi realizado novamente, porém os microtubos foram expostos à luz por diferentes períodos de tempo para otimização do tempo de exposição à luz. O tempo de 5 minutos foi necessário para a completa fotólise de EMA. A técnica EMA-PCR em Tempo Real apresenta-se como uma ferramenta eficiente na detecção de apenas células viáveis de <span style="font-style: italic;">L. monocytogenes</span> presentes numa amostra.</font><br><font size="4"><span style="font-weight: bold;">Palavras-chaves:</span> EMA, PCR em Tempo Real, <span style="font-style: italic;">Listeria monocytogenes</span></font><br><font size="4">Apoio Financeiro: FAPEMIG</font><br></div> </font></p><br><b>Palavras-chave: </b>&nbsp;EMA, Listeria monocytogenes, PCR em Tempo Real</td></tr></table></tr></td></table></body></html>