ÿþ<HTML><HEAD><TITLE>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </TITLE><link rel=STYLESHEET type=text/css href=css.css></HEAD><BODY aLink=#ff0000 bgColor=#FFFFFF leftMargin=0 link=#000000 text=#000000 topMargin=0 vLink=#000000 marginheight=0 marginwidth=0><table align=center width=700 cellpadding=0 cellspacing=0><tr><td align=left bgcolor=#cccccc valign=top width=550><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=3><font size=1>25º Congresso Brasileiro de Microbiologia </font></font></strong><font face=Verdana size=1><b><br></b></font><font face=Verdana, Arial,Helvetica, sans-serif size=1><strong> </strong></font></font></td><td align=right bgcolor=#cccccc valign=top width=150><font face=arial size=2><strong><font face=Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif size=1><font size=1>ResumoID:1273-1</font></em></font></strong></font></td></tr><tr><td colspan=2><br><br><table align=center width=700><tr><td>Área: <b>Microbiologia Clinica ( Divisão A )</b><p align=justify><strong><P>AVALIAÇÃO DO DIAGNÓSTICO MOLECULAR (RFLP-PCR) PARA IDENTIFICAÇÃO DE FUNGEMIAS EM ESPÉCIMES CLÍNICOS ISOLADOS DE PACIENTES ATENDIDOS NA FUNDAÇÃO DE MEDICINA TROPICAL DO AMAZONAS.</P></strong></p><p align=justify><b><u>Mirlane Silva dos Santos </u></b> (<i>FMTAM</i>); <b>Ana Karla Lima Freire </b> (<i>FMTAM</i>); <b>Ivanete Lima Sampio </b> (<i>FMTAM</i>); <b>Ramodnil Moura Santos </b> (<i>UEA</i>); <b>João Vicente Braga de Souza </b> (<i>INPA</i>)<br><br></p><b><font size=2>Resumo</font></b><p align=justify class=tres><font size=2><SPAN style="FONT-SIZE: 12pt; FONT-FAMILY: 'Times New Roman','serif'; mso-fareast-language: EN-US; mso-fareast-font-family: Calibri; mso-ansi-language: PT-BR; mso-bidi-language: AR-SA"><STRONG>Introdução: </STRONG></SPAN><SPAN style="FONT-SIZE: 12pt; FONT-FAMILY: 'Times New Roman','serif'; mso-fareast-language: EN-US; mso-fareast-font-family: Calibri; mso-ansi-language: PT-BR; mso-bidi-language: AR-SA">O diagnóstico molecular tem tornado-se cada vez mais acessível para a identificação, possibilitando um diagnóstico precoce, sensível e específico quando comparados com os métodos convencionais de fenotipagem. <B style="mso-bidi-font-weight: normal">Objetivo: </B>Avaliar a RFLP-PCR para identificação de linhagens fúngicas em espécimes clínicos. <B style="mso-bidi-font-weight: normal">Metodologia: </B>Foi selecionada uma linhagem de cada espécie de <I style="mso-bidi-font-style: normal">Candida albicans</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">C. parapsilosis, C. tropicalis, C. glabrata, </I>Complexo <I style="mso-bidi-font-style: normal">Cryptococcus neoformans </I>var<I style="mso-bidi-font-style: normal">. neoformans e </I>var<I style="mso-bidi-font-style: normal">. gatti, Histoplasma capsulatum</I>, oriundas da micoteca da Fundação de Medicina Tropical do Amazonas. Foram reativadas em meio de cultura ágar sabouraud, seguida da extração do DNA que foi realizada com o kit comercial <I style="mso-bidi-font-style: normal">QIA amp DNA Blood and Tissue  Qiagen.</I> O DNA extraído foi submetido à amplificação por PCR, desenhada para amplificar regiões do espaçamento interno do rDNA com os pares de primers <EM>ITS1/ITS4, ITS5/NL4</EM> e <EM>Primer1/ Primer2</EM>. Após a PCR as amostras foram submetidas à digestão enzimática. <B style="mso-bidi-font-weight: normal">Resultados: </B>Todos os pares de primers mostraram-se adequados para a obtenção de produtos de PCR, amplificando todas as amostras submetidas à análise. Os produtos de PCR obtidos com o par de primers <EM>ITS1/ITS4</EM> quando digeridos com as enzimas <I style="mso-bidi-font-style: normal">Hae</I> III, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Ddel </I>e <I style="mso-bidi-font-style: normal">Bfal</I> apresentaram 5, 6 e 4 perfis de RFLP, respectivamente, com no máximo 3 bandas por isolado. Os produtos de PCR obtidos com o par de primer <EM>ITS5/NL4</EM> digeridos com as enzimas <I style="mso-bidi-font-style: normal">Hae</I> III, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Ddel</I> e <I style="mso-bidi-font-style: normal">Bfal</I> apresentaram 6, 7 e 3 perfis de RFLP, respectivamente, com até 5 bandas por isolado. Os produtos de PCR obtidos com o par de <EM>Primer 1/ Primer 2</EM> e digeridos com as enzimas <I style="mso-bidi-font-style: normal">Hae III</I>, <I style="mso-bidi-font-style: normal">Ddel</I> e <I style="mso-bidi-font-style: normal">Bfal</I> apresentaram 4, 3 e 3 perfis de RFLP, com respectivamente, com até 2 bandas por isolado.<B style="mso-bidi-font-weight: normal"> Conclusão: </B>A combinação dos produtos de PCR obtidos com o par de primers <I style="mso-bidi-font-style: normal">ITS5 </I>e <I style="mso-bidi-font-style: normal">NL4</I>, seguida da digestão com a enzima <I style="mso-bidi-font-style: normal">Ddel</I> foram capazes de produzir um perfil de RFLP para cada espécie estudada, permitindo assim a distinção entre elas.</SPAN> </font></p><br><b>Palavras-chave: </b>&nbsp;diagnóstico molecular, fungemias, pcr/rflp</td></tr></table></tr></td></table></body></html>